Сравнительная оценка методов терапии инфекционного перитонита плотоядных (на примере кошек)

4

Содержание



	Введение	3

	Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ	6

	1.1. Инфекционный перитонит кошек	6

	1.2. Клинические признаки болезни	8

	1.3. Диагностика инфекционного перитонита у кошек	11

	1.4. Методы лечения и профилактики инфекционного перитонита кошек	21

	ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ	28

	2.1. Объекты  исследования	28

	2.2. Применение препаратов на основе растительных полипренолов при различных формах кошачьего инфекционного перитонита	30

	2.3. Оценка эффективности препарата  «Форвет» при профилактике и терапии  инфекционного перитонита у  кошек	33

	2.4. Оценка эффективности лечения влажной формы инфекционного перитонита у кошек с использованием этиотропных средств по оригинальной комплексной методике Переслегиной	37

	ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ РАБОТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ	42

	3.1. Использование эффективной терапии при заболевании кошек инфекционным перитонитом	42

	3.2. Профилактика инфекционного перитонита у кошек	45

	Выводы	47

	Список литературы	49

	Приложения	54



Введение



Актуальность темы исследования. Инфекционный перитонит кошек достаточно молодое заболевание, однако оно успело получить широкое распространение по всему миру всего за несколько десятилетий. Не явилась исключением и Россия – теперь это заболевание все чаще регистрируют на территории нашей странны. Из всех вирусных болезней эта инфекция в данный момент вызывает больше всего вопросов у владельцев кошек и практикующих ветеринарных врачей.

Инфекционный перитонит кошек (ИПК) поражает животных семейства кошачьих, и помимо домашних и диких кошек может встречаться у львов, гепардов, ягуаров, тигров, леопардов, каракалов и т.д.

Первые официальные упоминания об этом недуге появились в Соединенных Штатах в 1960 году, но существует мнение, что болезнь появилась немного раньше 50-х. Причина внезапного появления ИПК не известна. Резкое увеличение заболеваемости животных между 1950 и 1975 в Америке совпало с усиленным интересом к кошкам как  к домашним животным, увеличению количества кошек в городах, интенсивным выведением новых пород, племенным разведением.  

В России в связи с повышением за последние десятилетия интереса к разведению и содержанию племенных животных и созданием в нашей стране кошачьих питомников, заболеваемость кошек ИПК резко увеличивается с каждым годом.

Болеют кошки всех возрастов, но наиболее чувствительны к заболеванию молодые животные в возрасте до 2 лет, а также взрослые старше 10 лет. Количество зарегистрированных случаев ИПК не зависит от времени года (не наблюдается сезонности заболевания), соотношение по полу больных животных существенно не отличается (болеют как коты, так и кошки), особой чувствительностью к инфекции обладают кошки британской породы голубого и серого окраса. Не отмечено какой-либо устойчивости к инфекции у беспородных животных.

При таком опасном заболевании, как перитонит у кошек, лечение должно быть комплексным.

Цель дипломной работы – провести сравнительную оценку методов терапии инфекционного перитонита плотоядных (на примере кошек). 

Задачи: 

1. Рассмотреть теоретический аспект инфекционного перитонита у кошек; 

2. Рассказать об этимологии, распространении, патогенезе и клинических проявлениях инфекционного перитонита у кошек; 

3. Описать методы диагностики инфекционного перитонита у кошек; 

4. Рассказать о методах лечения инфекционного перитонита у кошек; 

5. Провести сравнительную оценку различных методов терапии инфекционного перитонита у кошек; 

6. Сделать выводы по работе. 

Объект исследования – инфекционный перитонит у кошек 

Предмет исследования – методы терапии инфекционного перитонита у кошек. 

Методологической основой работы является аналитический подход, предполагающий анализ работ по теме исследования. 

В связи с этим в данной работе используются следующие методы:

1. Аналитический  (анализ работ  по теме исследования)

2. Поисковый (включает в себя работу с каталогом, с научными и периодическими изданиями и специальной литературой).

3. Описательный  (наблюдение, анализ и классификация исследовательского материала)

4. Сравнительно-сопоставительный (сравнение и сопоставление методов лечения инфекционного перитонита у кошек различными лекарственными препаратами).

Научная новизна работы состоит в том, что впервые предпринимается попытка с помощью системного анализа различных схем лечения инфекционного перитонита у кошек, выявить наиболее эффективные  методы терапии.   

Теоретическая значимость работы заключается в осмыслении различных методов терапии инфекционного перитонита у кошек. 

Практическая значимость – использование полученного материала в спецкурсах и семинарах по инфекционному перитониту у кошек,  а также может послужить базой для дальнейшего исследования. 

Структура работы: дипломная  работа состоит из введения, двух глав,  разбитых на параграфы, заключения, списка использованной литературы и приложения. 





ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 

1.1. Инфекционный перитонит кошек

Инфекционный перитонит кошек (ИПК, Feline infectious peritonitis, FIP) — системная вирусная болезнь (Coronavirus) , которая поражает многие ткани организма. Определены две формы болезни: влажная и сухая. При влажной форме, воспалительная жидкость аккумулируется в абдоминальной полости. При сухой форме, вирус атакует различные органы, такие как почки и селезенка. Нет лечения для данной болезни и почти всегда исход фатальный. ИПК наиболее часто диагностируется у котят и взрослых кошек до 3х лет. Кошки в питомниках или в домах с несколькими животными имеют наивысший риск развития болезни. (Р.Я. Гильмутдинов Р.Я., с соавт., 2010)                   

Этиология

Инфекционный перитонит кошек был открыт в 1963г. Возбудитель, коронавирус, первоначально был назван вирусом инфекционного перитонита кошек. Впоследствии выяснилось, что в крови многих здоровых кошек содержались антитела к этому коронавирусу, и было высказано предположение, что эти кошки были заражены невирулентным коронавирусом, называемым кишечным коронавирусом кошек. В то время считалось, что кишечный коронавирус обитал исключительно в кишечнике и мог вызвать только легкую диарею у котят. Однако, последующие исследования показали, что у многих клинически здоровых кошек наблюдалась виремия, следовательно, распространение вируса не ограничивалось только кишечником. Эпидемиологические исследования показали, что до 10% кошек, имеющих антитела к коронавирусу, заболевают инфекционным перитонитом. Сейчас полагают, что вирулентный вирус инфекционного перитонита возникает в результате мутации кишечного коронавируса кошек в организме отдельных животных, у которых затем может развиться перитонит. Поскольку вирус инфекционного перитонита и кишечный коронавирус больше не могли считаться вирусами разных групп, было принято более широкое название «коронавирус кошек». Существует множество штаммов этого вируса, сильно различающихся по вирулентности; однако, надежного метода, позволяющего дифференцировать вирулентные штаммы от авирулентных, нет. (С. С. Братюха, 2005)

Распространение

Многие кошки, особенно содержащиеся группами, заражены коронавирусом. Процент кошек, реагирующих положительно при серологическом исследовании, составляет:

- 82% на выставках кошек

- 53% породистых кошек

- 28% домашних кошек, содержащихся группами

- около 15% домашних кошек, содержащихся поодиночке.

До 10% кошек, инфицированных коронавирусом и живущих большими группами, заболевают инфекционным перитонитом, тогда как у кошек, живущих поодиночке или маленькими устойчивыми группами, это отмечается редко. (С. С. Братюха, 2005)

Патогенез

Путь передачи коронавируса главным образом алиментарный, через зараженные фекалии. При заражении через ротовую или носовую полость первоначальная репликация вируса происходит в эпителиальных клетках глотки, дыхательного тракта или кишечника. Большинство инфекций на этой стадии протекают бессимптомно. Могут наблюдаться признаки легкого энтерита, но возможна хроническая или тяжелая диарея. Большинство кошек со временем избавляются от вируса, и перитонит не развивается. 

У некоторых кошек после репликации вируса в эпителиальных клетках развивается виремия, приводящая к инфекции клеток-мишеней – макрофагов. Вирус-специфичные антитела могут увеличить инфекционность вируса в отношении макрофагов; кошки с вирусным перитонитом часто имеют высокие титры антител против коронавируса. Вирус связывается с антителами, образуя иммунные комплексы, которые накапливаются в стенках мелких кровеносных сосудов, где активируют комплемент и каскады коагуляции, что приводит к иммуноопосредованному васкулиту. После этого возможны два варианта развития патологии. Первый, вовлечение в процесс многих кровеносных сосудов приводит к увеличению их проницаемости и скоплению богатого белками выпота в полостях тела и других пространствах, иногда включая сердечную сумку и мошонку. Результатом этого процесса является развитие экссудативного, или «влажного» перитонита. Второй вариант: при поражении меньшего количества сосудов течение перитонита более хроническое, характеризующееся образованием отдельных пиогранулем в различных тканях тела. В результате развивается неэкссудативная, или «сухая» форма перитонита. 

Факторы, определяющие, разовьется ли патология у кошки, зараженной коронавирусом, включают:



 штамм: различные штаммы коронавируса различаются по вирулентности 

 доза: заражение вирусом в более высоких титрах увеличивает риск развития перитонита 

 стресс: кошки с перитонитом обычно подвергались стрессу за 3-6 недель до заболевания экссудативным инфекционным перитонитом, и за несколько месяцев до заболевания сухим перитонитом 

Генетически обусловленная восприимчивость – вероятно, некоторые породы кошек более восприимчивы. Это дает основания предположить, что существует генетическая предрасположенность к развитию инфекционного перитонита, возможно, имеющая отношение к определенным локусам гена главного комплекса гистосовместимости. 

1.2. Клинические признаки болезни 

Клинически болезнь проявляется в двух формах: влажной (инфузионной), сопровождающейся скоплением экссудата в брюшной и/или плевральной полостях, и сухой (неинфузионной), проявляющейся в гранулематозном поражении внутренних, преимущественно паренхиматозных органов и не сопровождающейся накоплением экссудата в полостях тела. Инфузионный ИПК считается классической формой проявления и составляет приблизительно 75% клинических случаев. ИПК может иметь длительный инкубационный период (от одной недели до полугода), во время которого клинические признаки не наблюдаются. Кроме того, существует скрытая форма заболевания, при которой возможно выделение вируса во внешнюю среду. Передача вируса от больных животных происходит вертикально (трансплацентарно), либо горизонтально (контактно от животного к животному или через предметы ухода).

Первоначально коронавирус попадает в ротовую или носовую полость, где в фарингеальных эпителиальных клетках происходит первичная репликация вируса. Затем вирус проникает в клетки столбчатого эпителия кишечника - основное место его размножения и персистенции. При таком варианте заражения инфекция может протекать бессимптомно или проявляться в виде энтерита, легкого недомогания, диареи, снижения аппетита и не представляет опасности для жизни животного. Кошки с персистирующей коронавирусной инфекцией являются основным источником вируса, выделение которого может происходить со слюной, мочой, но основное количество выделяется с калом. (А.Н. Панин  с соавт., 2009)

Однако в некоторых случаях коронавирус приобретает способность поражать моноциты и макрофаги, и тогда инфекционный процесс формируется совершенно по другому пути, приводящему к развитию ИПК. После попадания в макрофаги, вирус разносится по всему организму. Пораженные макрофаги скапливаются под серозной оболочкой стенок кровеносных сосудов, вызывая системный васкулит, что приводит к повышению проницаемости сосудов и скоплению выступающей жидкости (выпота) в полостях тела (инфузионная форма ИПК). В случае незначительного поражения кровеносных сосудов паренхиматозных органов (печени, селезенки, легких, брыжеечных лимфатических узлов, стенок кишечника, поджелудочной железы, увеального глазного тракта) происходит образование отдельных пиогранулем (гранулематозная, сухая форма ИПК). Однако, разделения на формы течения болезни условны, поскольку нередко обе формы проявляются одновременно, или в течение болезни одна сменяет другую. Обе формы заболевания могут привести к смерти животного. 

Изменение тропности коронавируса и поражение макрофагов - ключевого компонента в системе иммунной защиты организма - является основной причиной, обуславливающей тяжесть заболевания ИПК. Заражение макрофагов приводит к так называемому антителозависимому усилению инфекции.

Экссудативный («влажный») и неэкссудативный («сухой») перитонит протекают с разными симптомами. Так как они отображают разные стороны одного клинического процесса, в некоторых случаях наблюдаются признаки обеих форм. Данные анамнеза и клинические признаки инфекционного перитонита варьируют в широких пределах, в зависимости от формы заболевания. В дополнение к обычным анамнестическим данным, для диагностики перитонита существенны некоторые другие факторы:

 Не была ли кошка взята от заводчика, из приюта, где содержится много животных, или гостиницы для животных в последние несколько недель или месяцев? В этих ситуациях вероятность заражения коронавирусом больше 

Подвергалась ли кошка стрессу в последние несколько недель, например, не было ли смены жилища или хирургических вмешательств? Экссудативный перитонит, острая форма инфекционного перитонита, обычно развивается в течение 3–6 недель после стрессовой ситуации в жизни кошки

Возраст кошки? Несмотря на то, что перитонитом болеют кошки всех возрастов, 80% заболевших животных моложе 2 лет. Кошки обоих полов одинаково восприимчивы 

Порода кошки? Хотя болеют кошки любых пород, породистые кошки составляют гораздо больший процент

Не было ли в анамнезе диареи, кашля или чихания в последние несколько недель? Диарея и легкие респираторные симптомы могут предшествовать развитию обеих форм скоротечного инфекционного перитонита

Не было ли в анамнезе контакта с кошками, особенно из одного помета, больных инфекционным перитонитом?  (И.В. Петрухин, 2013)

ИПК системная вирусная болезнь, характеризующаяся скрытым началом, периодической неконтролируемой лихорадкой, пиогранулематозной реакцией, аккумулирование экссудата в полостях тела, высокой смертностью.

Вирус ИПК реплицируется локально в эпителиальных клетках респираторного тракта или орофарингса.  Вирусные тела  начинают вырабатываться, и вирус  поглощается макрофагами. Вирус транспортируется макрофагами/моноцитами по организму, локализуясь в стенках различных вен и периваскулярного пространства. Локальная периваскулярная репликация вируса и последующая пиогранулематозная реакция со стороны тканей  образует характерную картину поражения при ИПК.

Поражаемые системы

Мультисистемная – пиогранулематозные или гранулематозные  повреждения происходит в сальнике, на серозных оболочках органов брюшной полости, таких как печень, почки, кишечник, в абдоминальных лимфатических узлах, и подслизистом слое кишечника.

Респираторная – поражения на поверхности легких, плевральный выпот при влажной форме ИПК.

Нервная – васкулярные поражения проявляются на всем протяжении  ЦНС, особенно, на оболочках

Офтальмологическая -  повреждения могут проявляться увеитом  и хореоретинитом. (Справочник…, 2009)

1.3. Диагностика инфекционного перитонита у кошек

Вопреки многим утверждениям, простых методов диагностики инфекционного перитонита у живого животного, кроме биопсии и гистологии пораженных тканей, не существует. Многие имеющиеся тест-системы выявляют заражение коронавирусом, и обратная ПЦР определяет коронавирус кошек. Ни одним методом нельзя отличить вирулентный штамм коронавируса от авирулентного, хотя некоторые методы позволяют дифференцировать изоляты, полученные в лаборатории. В большинстве случаев диагноз «инфекционный перитонит кошек» (любой формы), поставленный на основании клинических признаков и анамнеза, требует дополнительного исследования несколькими диагностическими методами, по результатам которых, соответствующим друг другу, можно предположить это заболевание.

 Эти методы включают:

 Клиническую патологию для диагностики поражения органов

 Анализ выпота брюшной или грудной полости 

 Серологические тесты для выявления заражения вирусом

 Обратную ЦПР для определения вируса

 Гистопатологическое исследование пораженных тканей -  это единственный метод, позволяющий  поставить окончательный диагноз инфекционного перитонита. (В.М. Авилов, 2016)

Клиническая патология. Изменения биохимии сыворотки зависят от поражения органов и длительности заболевания. Гиперглобулинемия (иногда моноклональная гаммопатия) и увеличенная концентрация ?1-кислого гликопротеина отмечаются постоянно. Неспецифические изменения в составе крови могут включать нейтрофилию (часто со сдвигом влево), лимфопению и нерегенеративную анемию. Подобные изменения более характерны для сухого перитонита. Возможны коагулопатии.  (В.М. Авилов, 2016)

Природа перитонеальной жидкости. Анализ жидкости позволяет выявить изменения, характерные для инфекционного перитонита, или исключить его. Выпот при инфекционном перитоните обычно характеризуется следующими свойствами:

 Обычно соломенного цвета и всегда стерильный 

 Высокое содержание белка (более 35 г/л), пенится при встряхивании, при стоянии в течение нескольких   часов при комнатной температуре могут образовываться сгустки

При соотношении альбумины/глобулины менее 0,4, вероятность того, что это инфекционный перитонит, высокая; более 0,8 это маловероятно; при значении между 0,4 и 0,8 это возможно, но неопределенно

Концентрация ?1-кислого гликопротеина более 1500 мг/мл  характерна для инфекционного перитонита

Общее количество ядерных клеток менее 5000 клеток/мл (в основном нейтрофилы и макрофаги)

При исследовании методом обратной ЦПР реакция положительная (Н.А. Масимов, 2009)

Серологические методы используются: 

 для исследования кошек с подозрением на инфекционный перитонит

 для исследования кошек, бывших в контакте с кошками, возможно, больными инфекционным перитонитом

 по желанию заводчика кошек 

 для проверки кошек, живущих в доме, на присутствие коронавируса

 для проверки кошек перед подселением к другим, свободным от коронавируса.

Интерпретация результатов серологических методов может вызывать затруднения, поскольку: 

 Кошки со сходными клиническими признаками могут случайно дать положительную реакцию, особенно породистые; следовательно, не смотря на то, что высокие титры антител у кошек в сочетании с клиническими признаками характерны для перитонита, это не имеет диагностического значения

 Некоторые кошки с экссудативным перитонитом имеют низкие титры антител или реагируют отрицательно, возможно, из-за огромного количества вирусных частиц в организме, в результате чего все антитела оказываются связанными и, следовательно, неспособными связаться с антигенами тест-системы. Некоторые серологические тесты определяют наличие антител, не измеряя титров (например, иммуноиммиграционный экспресс-метод, Snap), в то время как другие (Immunocomb®, иммунофлуоресцентный метод) позволяют определить титры. Результаты, выраженные в титре, удобны для мониторинга отдельных кошек или группы кошек одного владельца на предмет избавления от коронавируса. (Н.А. Рахманина с соавт., 2013)

Интерпретация результатов серологических тестов у всех кошек.

Экссудативный инфекционный перитонит: хотя серологические методы используются для диагностики экссудативного инфекционного перитонита, применять их следует только в случаях, когда клинические признаки, отношение альбумин/глобулин, содержание ?1-кислого гликопротеина и цитологические свойства выпота характерны для перитонита. Кошки с экссудативным перитонитом могут реагировать отрицательно, но могут и иметь антитела, в том числе в высоких титрах. Кошки с другими заболеваниями могут иногда иметь антитела к коронавирусу, особенно если в доме есть другие кошки, или если они взяты из приюта или от заводчика в последние 6–12 месяцев. 

Сухой инфекционный перитонит: титры антител к коронавирусу, определенные иммунофлуоресцентным методом, обычно равны 640 или выше. Титры менее 160 почти всегда позволяют исключить сухой перитонит. Обнаружение антител у здоровой кошки принимать за раннюю стадию сухого перитонита ошибочно. (Н.А. Рахманина с соавт., 2013)  

Интерпретация результатов серологических тестов у здоровых кошек:  Проверка здоровых кошек, бывших в контакте с больными: здоровых кошек, контактировавших с больными инфекционным перитонитом или источниками инфекции, проверяют по одной из двух причин, описанных ниже. В любом случае нужно пояснить владельцу, что кошка с большой вероятностью окажется сероположительной. Заражаются почти все кошки, контактировавшие с источником инфекции. Это не означает плохого прогноза, так как перитонит развивается менее чем у 10% инфицированных кошек; чаще всего организм освобождается от вируса и животные начинают реагировать отрицательно.

В ситуации, когда владелец собирается завести другую кошку взамен умершей от инфекционного перитонита и хочет знать, распространяет ли вирус кошка, контактировавшая с больной: 

 Если кошка, контактировавшая с больной, при серологическом исследовании реагирует отрицательно, маловероятно, что она инфицирована, и, следовательно, не распространяет вирус; заводить новую кошку безопасно

Если кошка реагирует положительно (то есть имеет титр антител 1:10 или более), существует 1 шанс из 3, что она распространяет коронавирус, таким образом, заводить другую кошку будет неразумно (за исключением случаев, когда новая кошка имеет антитела, показывающие, что она контактировала с источником инфекции). Кошку нужно исследовать повторно спустя 3–6 месяцев, чтобы установить, снизился ли титр антител. У большинства кошек, освободившихся от вируса, антитела исчезают в период от 3 месяцев до нескольких лет. В идеале, кошек, реагирующих положительно, надо отделять от отрицательно реагирующих кошек, живущих в доме. Как только кошка начинает реагировать отрицательно, ее следует переместить в соответствующую группу во избежание реинфекции от других кошек. (Справочник…, 2007)

Если владелец хочет знать прогноз для кошки, контактировавшей с источником инфекции:

 Если кошка реагирует отрицательно, она, вероятнее всего, не инфицирована и не заболеет инфекционным перитонитом 

Если кошка реагирует положительно, она может заболеть перитонитом, но вероятность этого мала (менее 1:10) 

Проверка племенных кошек: заводчики часто просят исследовать животных перед спариванием. 

В этом случае:

 Кошка, реагирующая отрицательно, вероятнее всего, не инфицирована и не выделяет вирус, следовательно, может спариваться с животными, реагирующими отрицательно

 Если кошка реагирует положительно, будет разумным найти партнера, также реагирующего положительно, чтобы уменьшить риск заноса заболевания в группу, свободную от вируса. Для предотвращения инфекции котят необходимы изоляция и ранний отъем. (Справочник…, 2009)

Проверка группы кошек на коронавирус: случайная выборка 3 или 4 кошек, живущих вместе, для исследования покажет, является ли коронавирус эндемичным, поскольку он высоко контагиозен. Дома, в которых содержится менее 10 кошек или где кошки живут изолированными друг от друга группами по 3 или менее животных, часто в конечном счете избавляются от инфекции. Исследование каждые 6–12 месяцев поможет выяснить, когда это произойдет, так как титр антител падает и больше кошек начинает реагировать отрицательно. Во избежание повторной инфекции рекомендуется отделить отрицательно реагирующих кошек от положительно реагирующих.

Проверка кошки, подселяемой к группе, свободной от коронавируса: в группы, свободные от инфекции, должны вводиться только кошки, реагирующие отрицательно. Кошек, имеющих антитела, можно изолировать и повторно исследовать через каждые 3–6 месяцев, пока результат не станет отрицательным. (В.А. Сергеев и соавт., 2007)

Обратная ПЦР

Обратная полимеразная  цепная реакция амплифицирует выбранную часть вирусной нуклеиновой кислоты до концентраций, позволяющих ее определить. Метод чувствителен, но требует строгих мер предосторожности, чтобы избежать контаминации, приводящей к ложноположительным результатам. Некоторые лаборатории утверждают, что имеют тест-системы на основе обратной ПЦР для диагностики инфекционного перитонита, и могут даже предсказать вероятность развития перитонита у здоровой кошки; однако, на момент написания книги, при анализе последовательностей генов нескольких штаммов вируса инфекционного перитонита и кишечного коронавируса кошек мутация, отвечающая за вирулентность, обнаружена не была. Из-за вариабельности генома коронавируса маловероятно, что когда-либо появится тест-система, позволяющая различить вирулентные и невирулентные штаммы. Для исследования можно брать фекалии, кровь, слюну или выпот, хотя мониторинг выделения вируса со слюной бесполезен, так как оно прекращается задолго до прекращения выделения с фекалиями. 

Обратную ПЦР можно использовать для диагностики инфекционного перитонита: 

 Присутствие коронавирусной РНК в выпоте является вероятным, но не окончательным признаком инфекционного перитонита

Положительные результаты при исследовании крови методом ПЦР не позволяют поставить диагноз "инфекционный перитонит", так как здоровые кошки или кошки, больные другими заболеваниями, также могут реагировать положительно

Отрицательный результат, полученный при исследовании крови методом обратной ПЦР, не исключает возможность инфекционного перитонита, так как больные кошки могут реагировать отрицательно.

Обратная ЦПР может использоваться для мониторинга распространения вируса в доме, где проводится контроль над заболеванием. Кошек можно разделить на 3 типа: 

 Большинство кошек, инфицированных коронавирусом, некоторое время распространяют вирус, имеют антитела, затем выделение прекращается и антитела пропадают; затем кошки инфицируются повторно и цикл повторяется.

Небольшая группа кошек является носителями вируса и распространяет его постоянно.

Небольшая группа кошек проявляет устойчивость к распространению вируса.  (И.М. Фурман и соавт., 2010)

Общая патология/гистопатология

Серозные поверхности часто покрыты фибринозными наложениями, диаметром 1–2 мм. В отдельных органах могут обнаруживаться крупные гранулемы. Множественные опухоли и другие инфекции (например, туберкулез) могут протекать со сходными признаками. Печень, сальник и кишечник можно исследовать с помощью биопсии, в то время как ткани глаза и центральной нервной системы доступны только для посмертного исследования. Гистологическое исследование позволяет поставить окончательный диагноз. (Ю.О. Терехова и соавт., 2012)

К сожалению, прижизненная диагностика не всегда дает возможность оградить животное от летального исхода - заболевание почти всегда заканчивается смертью животного. Прижизненная диагностика должна быть комплексной. Она основана на анализе данных анамнеза, гематологических исследованиях и использовании различных вспомогательных диагностических тестов. 

Биохимические параметры сыворотки крови при ИПК не имеют стабильно существенных отклонений, однако за счет специфики воспаления растет содержание гамма-глобулина и острофазных белков, в частности фибриногена как в сыворотке крови, так и в экссудатах. Увеличение концентрации белка в биологических жидкостях прямо пропорционально степени тяжести инфекционного процесса. Именно для выявления этих показателей направлены тесты неспецифической экспресс-диагностики: йодно-агглютинационный тест и проба Ривалта, обладающие высокой достоверностью результатов.

Йодно-агглютинационный тест – неспецифическая биохимическая реакция. Метод основан на способности йодного реактива образовывать агглютинаты (визуально обнаруживаемые хлопья) при смешивании с образцами сыворотки крови или асцитной (плевральной) жидкости, содержащей гамма-глобулин, если его показатели превышают физиологическую норму (30%). Метод очень прост в применении и имеет высокую степень соответствия результатам РНГА, что позволяет рекомендовать его при исследовании сывороток и экссудатов для быстрой диагностики ИПК в клинических условиях. 

Тест Ривалта применяется для исследования выпотов. Метод 
основан на том, что по своим биохимическим и цитологическим показателям эффузионная жидкость при ИПК является фибринозным экссудатом и характеризуется значительным содержанием белка (32-118 г/л), особенно гамма-глобулина (отражая состав сыворотки), и высокой концентрацией фибрина, но при этом имеет низкое содержание клеток (1000 кл/мл). 
Для выполнения этого теста используется 2%-ный раствор уксусной кислоты, в пробирку с которым вносится капля исследуемого экссудата. 
Если капля растворяется, то проба считается отрицательной. При положительном тесте капля экссудата сохраняет очертания и некоторое время держится вверху пробирки или медленно опускается вниз в форме медузы, оставляя за собой линейный след. Прогностическая ценность результатов Ривалт теста составляет в положительном случае 86%, в отрицательном - 97%. 

Для специфической диагностики используют как методы обнаружения непосредственно возбудителя (ИФА, МФА, ПЦР), так и методы выявления АТ (РНГА, МФА, ИФА, иммуноблоттинг). (Н.А. Рахманина, 2007)

В последнее время широкое применение находит иммуноферментный анализ (ИФА) для определения точной величины титра АТ к вирусу ИПК.

Проведенные с применением «Набора для диагностики инфекционного перитонита кошек (ИПК) иммуноферментным методом» (ООО «Ветбиохим») исследования показали 100%-ную корреляцию результатов применения метода РНГА и ИФА при определении титра антител к коронавирусу. Результаты ИФА также имеют диагностическое и прогностическое значение. При показателях титра антител 1:3200 и выше (индивидуальное содержание животного) и титра 1:6400 и выше (при скученном содержании животных) диагноз ИПК может считаться установленным. Титр АТ 1:800 — 1:1600 может указывать на латентную форму болезни или носительство; в таком случае результат считается сомнительным. Для уточнения диагноза проводят повторные исследования клинического материала с интервалом 2-4 недели. Снижение или увеличение титра АТ напрямую связано с течением инфекционного процесса. Благодаря этому методу можно не только диагностировать ИПК, но и выявлять вирусоносителей, прогнозировать развитие инфекции, а также оценивать успех применяемой терапии при лечении и профилактике болезни.

В качестве дополнительного подтверждающего теста при диагностике ИПК можно применять метод иммуноблоттинга.

Данный метод дает возможность определить специфичность АТ к основным структурным белкам коронавируса (N, S, M). Сыворотки крови с низким титром АТ (?1:200) реагировали только с одним белком N вируса ИПК, однако, по мере повышения титров АТ увеличивался и спектр детектируемых вирусных антигенов. Сыворотки крови с высокими титрами АТ 1:3200) выявляли все основные структурные белки коронавируса (N, S, M). То есть, чем больше величина титра АТ в сыворотке, тем больше спектр детектируемых ей белков вируса. При выявлении в сыворотке крови кошек АТ к высокомолекулярным белкам коронавируса (М.м. > 85 кД), прежде всего к S-белку, диагноз на ИПК можно считать подтвержденным. (Н.А. Рахманина, 2007)

Наличие АТ к коронавирусу ещё не свидетельствует о заболевании ИПК, поскольку большинство кошек имеет большую вероятность встретиться с вирусом в естественных условиях, но только у 10% зараженных животных развивается перитонит. Тем не менее, положительно реагирующих животных необходимо изолировать. Если в доме содержится несколько кошек, то серопозитивные животные должны быть обязательно отделены от серонегативных. В каждой группе должны быть свои (желательно индивидуальные) миски для еды и лотки (туалеты). Наполнители в лотках необходимо менять не реже двух раз в неделю, фекалии удалять ежедневно. Во время смены наполнителя следует обрабатывать лотки хлоркой или другими дезинфектантами. Необходимо минимизировать стрессы у животных, уменьшить количество содержащихся в группах животных до 3-4, улучшить кормление, добавить в рацион витамины А, С, Е. Через 3-4 месяца следует провести повторные исследования. Исчезновение АТ к коронавирусу будет свидетельствовать об освобождении организма от вируса, в этом случае кошку можно считать условно здоровой, и в дальнейшем в отношении нее следует применять все вышеописанные меры общей профилактики. Рост титров АТ, напротив, может быть связан только с прогрессированием инфекции. Заболевших животных необходимо обязательно изолировать от других животных и приступить к лечению. (Н.А. Рахманина, 2015)

Кошек, переболевших ИПК, лучше стерилизовать и в дальнейшем содержать отдельно, поскольку большинство из них остается скрытыми вирусоносителями.

В приложении 1 представлены различные методы диагностики инфекционного перитонита кошек и материалы, необходимые для исследования. 

1.4. Методы лечения и профилактики инфекционного перитонита кошек

Для лечения кошек с инфекционным перитонитом были использованы различные подходы. Проверенным подходом при других вирусных инфекциях является использование препаратов, которые специфически ингибируют репликацию вируса. Вторым подходом является ингибирование ключевых аспектов воспалительного ответа субстанциями типа интерферона. Второй подход редко работает независимо, но успешен, когда комбинируется со специфическими противовирусными препаратами (напр.альфа – интерферон, используемый вместе с противовирусными препаратами, такими как рибавирин, тенофовир и энтекавир при вирусном гепатите В и/или С). Третьим подходом является стимулирование иммунной системы неспецифически, в надежде, что она будет способна справиться с инфекцией. Некоторые подходы комбинируют один или более этих типов лечения. Независимо от используемого подхода, соответствующие контролируемые клинические испытания, как безопасности, так и эффективности, должны быть условием любых научных публикаций, предлагающих лечение инфекционного перитонита кошек

Противовирусные препараты существуют двух основных типов: один тип нацелен на клеточные органеллы, которые вирусы используют с целью их репликации, в то время как другие нацелены на некоторую специфическую активность вирусной инфекции и репликацию. Препараты, которые повреждают клеточные органеллы, имеют наименьшую вероятность быть эффективными, поскольку они имеют тенденцию оказывать негативный эффект как на клетку, так и на вирус. Наиболее полезные противовирусные методы лечения включают препараты, которые направлены на специфические регионы вирусного генома, которые регулирует ключевые процессы инфекции или репликации. (Н.А. Рахманина, 2013)

Коронавирус кошек имеет р.......................